مؤشرات (اندیکاسیون) التشخيص الوراثي قبل الزرع PGD
خزعة قسیم ارومی (بیوبسی بلاستومر)
(ایمونولوجی) مناعة العقم عند الرجال
مناعة الخصية
مع بداية تكوين الحيوانات المنوية خلال فترة البلوغ وظهور مستضدات جديدة على الخلايا الانتصافية، هناك تحدٍ للجسم يجب معالجته. ترجع حماية الخلايا الجنسية من هجمات الجهاز المناعي من خلال “مناعة الخصية” إلى وجود حاجز دموي في الخصية ونقص الاستجابات المناعية لمولدات المضادات.
تشير الدراسات إلى أن الخصيتين لا تُحفظ بعيدًا عن متناول جهاز المناعة، ولكن الاستجابات متوازنة في هذا المجال بحيث يظل الجهاز المناعي قادرًا على مقاومة الغدد التناسلية ضد مسببات الأمراض. يبدو أن آليات التحكم في مناعة الخصية تشمل العوامل التي تتحكم أيضًا في تكوين الحيوانات المنوية.
(ایمونولوجی) مناعة العقم عند الرجال
1- دور حاجز الدم في الخصية وخلايا سیرتولی
يتم إنشاء الحاجز الدموي الخصوي عن طريق وصلات محكمة بين خلايا سيرتولي المجاورة والبروتينات المسامية، والظهارة تقسم الأنابيب المنوية إلى قناتين قاعديتين ومتجاورتين. في الجزء القاعدي، توجد الخلايا المولدة للحيوانات المنوية والخلايا المنوية قبل اللبتوتون، بينما توجد الخلايا المنوية الأخرى في القناة المجاورة بعد مرحلة ما قبل اللبتوتين، والحيوانات المنوية (اسبرماتید)، والحيوانات المنوية (اسبرماتوزوا). الغرض الرئيسي من هذا الحاجز هو حماية الخلايا الجنسية من الاستجابات المناعية ومنع هجمات المناعة الذاتية.
من المقبول الآن أن الحاجز الدموي الخصوي ليس العامل الوحيد في مناعة الخصية لأن هناك خلايا منوية في الجزء القاعدي من الأنبوب المنوية التي تعبر عن مستضدات جديدة. هذا الحاجز غير مكتمل أيضًا في شبكة الخصية. لذلك، هناك آليات أخرى بالإضافة إلى الفصل الجسدي الناجم عن حاجز الدم في الخصية لمثل هذه المناعة في الخصية. بالإضافة إلى المشاركة في إنشاء حاجز الدم الخصوي من خلال إنتاج الجزيئات المثبطة للمناعة، تشارك خلايا سيرتولي في تثبيط الاستجابات المناعية والحفاظ على مناعة الخصية. بالإضافة إلى هذه الخصائص، تقوم خلايا سيرتولي بإنتاج وإفراز السيتوكينات المضادة للالتهابات مثل 8-TGF و Activin.
2-دور الضامة(ماکروفاج)
بالإضافة إلى دور البلاعم (ماکروفاج) في الاستجابات المناعية الفطرية، فإن هذه الخلايا ضرورية أيضًا للحفاظ على توازن الأنسجة وتنظيمه. توجد الضامة عادة في الفراغ الخلالي للخصية ولا توجد أبدًا في الظهارة المنوية. الضامة الخصية ضد المنبهات الإفرازات الالتهابية تفرز كميات صغيرة من السيتوكينات الالتهابية؛ ولديها أيضًا تعبير أقل عن عائلة جينات المستقبل الشبيهة بـToll-like receptors وتثبط مسار الرسالة الالتهابية NF-KB، والتي بدورها تساهم في مناعة الخصية. أظهرت الدراسات التي أجريت على الحيوانات المختبرية أن البلاعم المضادة للالتهابات أكثر وفرة من البلاعم الالتهابية في الخصية، وأن الضامة المضادة للالتهابات تلعب دورًا بارزًا في جهاز المناعة.
3-دور الخلايا المتغصنة(دندریتی)
عدد هذه الخلايا في أنسجة الخصية صغير جدًا ولكن في الحالات الالتهابية يزداد عددها بشكل ملحوظ، والخلايا المتغصنة غير الناضجة لديها قدرة عالية على امتصاص المستضد وقليل من النشاط لتحفيز الخلايا التائية T، بينما تكون الخلايا البالغة نشطة ولديها انخفاض في الالتقام الخلوي وهي منبهات جيدة للخلايا التائيةT. وفقًا للدراسات، تُرى الخلايا المتغصنة في أنسجة الخصية في الغالب مع النمط الظاهري والتولوين غير الناضجين، ولكن في وقت التهاب الخصية، تكون هذه الخلايا ناضجة وبعد امتصاص المستضدات، تهاجر إلى العقد الليمفاوية وتنشط الخلايا التائيةT. تبدأ الاستجابات المناعية.
4-دور الخلایا التائیة T
عدد الخلايا الليمفاوية بين كريات الدم البيضاء في الخصية هو 10-20 ٪، والتي عادة ما تشمل خلایا CDs ، CD4 + T، وخلايا Treg. العوامل المثبطة للمناعة مثل 10-TGF-8 أو IL أو Activin A، التي يتم إنتاجها موضعیاً في أنسجة الخصية، تحفز الاستجابات المثبطة في الخلايا الليمفاوية نتيجة التحمل لفترات طويلة. تشير الدراسات إلى أن هرمون التستوستيرون يعزز خلايا Treg، وأن العوامل الإفرازية سیرتولی مثل 8-TGF تفرق بين الخلايا Treg.
5-دور الهرمونات
أظهرت الدراسات المخبرية والسريرية أن الأندروجينات، بالإضافة إلى أدوارها الابتنائية والحيوانات المنوية، تلعب أيضًا دورًا في تقليل الاستجابات الالتهابية. يمنع علاج الخلايا المناعية وغير المناعية بالتستوستيرون جزيئات السيتوكين الالتهابية ويزيد من إنتاج السيتوكينات المضادة للالتهابات. يتم أيضًا تقليل هرمون التستوستيرون في موت الخلايا المبرمج اللاصق (آبوبتوز). بشكل عام، يلعب التستوستيرون دورًا في تثبيط السيتوكينات الالتهابية والمضادة للالتهابات في خلايا سيرتولي وليديج والخلایا الخلالية عن طريق تثبيط جهاز المناعة في الخصية عن طريق تحفيز تمايز الخلايا Treg وتنظيم توازن إنتاج الخلايا التائية T.
تطوير الأجسام المضادة للحيوانات المنوية لدى الرجال
تشمل الأجسام المضادة للحيوانات المنوية (ASA) مجموعة متنوعة من الأجسام المضادة التي تكون في الغالب غلوبولين مناعي A و 6. يمكن العثور على هذه الأجسام المضادة في مصل الدم والسائل المنوي للرجال، والإفرازات التناسلية والسائل الجريبي. الرجال المصابون بـ ASA في السائل المنوي لديهم أيضًا مثل هذه الأجسام المضادة في مصلهم. تشمل الأسباب المحتملة للأجسام المضادة للحيوانات المنوية لدى الرجال انسداد الأعضاء التناسلية والأمراض المعدية والتهابات دوالي الخصية وأورام الخصية وجراحة الخصية.
1- انسداد القناة التناسلية
تعتبر العمليات الجراحية البربخية (ابیدیدیم) والأسهر (وازدفران) لمنع مسارها هي الشروط الوحيدة المعتمدة لمستويات ASA المرتفعة. 100-50٪ من الرجال الذين خضعوا لعملية قطع القناة الدافقة (وازکتومی) لديهم ASA ثانوي في المصل والسائل المنوي. بالإضافة إلى ذلك، يمكن التعرف على ASA في المرضى الذين يعانون من الأسهر الثنائية الخلقية والتليف الكيسي (سیستیک فایبروزیس) بعد سن البلوغ. يمكن أن يكون تكوين ASA في حالة انسداد الجهاز التناسلي بسبب زيادة الضغط داخل القناة، وامتصاص الحيوانات المنوية وشظايا الحيوانات المنوية بواسطة الأنسجة الظهارية على طول المسار وانخفاض العوامل التنظيمية في البلازما.
2- عدوى والتهاب القناة التناسلي
على الرغم من تحدي الارتباط بين العدوى والتهاب القناة التناسلي وتطور ASA، فقد تم اقتراح آليات. يمكن أن يكون إغلاق القناة التناسلية بسبب التغيرات الالتهابية، وتمزق الحاجز الدموي الخصوي بسبب الالتهاب الموضعي، وتقليل العوامل المنظمة للمناعة، والتشابه المستضدي بين الكائنات الحية الدقيقة المسؤولة عن التهابات الجهاز التناسلي ومستضدات سطح الحيوانات المنوية، آليات لتكوين ASA في الظروف من عدوى والتهاب الخصيتين. في ظل هذه الظروف، هناك أساس لتطوير ASA، لكن الأدلة السريرية تظهر أن العلاقة بين هذه الأمراض وإنتاج ASA ضعيفة.
3-دوالی الخصیة (واریکوسل)
تم تقديم تقارير مختلفة منذ عام 1959، عندما تم الإبلاغ عن التقارير الأولى عن دوالي الخصية وإنتاج ASA. أظهرت بعض الدراسات أن ASA في المصل أعلى في المرضى الذين يعانون من دوالي الخصية واقترحت دوالي الخصية كسبب لـ ASA، بينما لم تجد دراسات أخرى مثل هذا الارتباط. لذلك، هناك حاجة إلى مزيد من الدراسات لإثبات الصلة بين دوالي الخصية وإنتاج ASA.
4-الخصیة المخفیة (کریبتور کیدیسم)
يحدث فشل الخصيتين في النزول إلى كيس التصلب مع انتشار 2/7- 1/4 عند الرضع الذكور، ويزيد هذا المعدل في الولادات المبكرة. كانت هناك عدة تقارير عن زيادة حدوث ASA بين الأشخاص الذين لديهم تاريخ من العملات المشفرة او الخصیة المخفیة، بينما لم يلاحظ آخرون وجود ارتباط بين المرض ووجود ASA. في مجموعة من الأولاد قبل سن المراهقة ولديهم تاريخ من العملات المشفرة، تشير الأدلة السريرية إلى أن ASA موجود في مصل هؤلاء الأفراد على الرغم من نقص تكوين الحيوانات المنوية.
في هذا الصدد، اقترح البعض أنه يمكن أيضًا التعبير عن مستضدات الحيوانات المنوية قبل الانقسام الاختزالي، أو أن حاجز الدم في الخصية قد يتأثر بالحرارة. ومع ذلك، فقد أظهرت الدراسات التي أجريت على الفئران المختبرية أنه في الحرارة، يظل حاجز الدم في الخصية سليمًا ولا يتأثر. كما يتضح، فإن الارتباط بين العملة المشفرة وتطوير ASA يمثل تحديًا بين الباحثين.
5- الرضوض والجراحة وأورام الخصية
يمكن أن تكون أي حالة تسبب تمزق الحاجز الدموي الخصوي عاملاً واضحًا في إنتاج ASA لأنه في مثل هذه الحالة سيكون الجهاز المناعي على اتصال مع مستضدات سطح الحيوانات المنوية. ومع ذلك، في أحد التقارير، كانت مستويات ASA قابلة للقياس في واحد فقط من ثمانية مرضى مصابين بصدمة في الخصية. الإجراءات الجراحية على الخصيتين أو الهياكل المحيطة (مثل إصلاح الفتق)، وخزعة الخصية، واستخراج الحيوانات المنوية من الخصية ليست عوامل واضحة في تطور ASA. أيضًا، يجب دراسة الفسيولوجيا المرضية لـ ASA. كما لا يوجد إجماع على الأورام ودورها في ASA.
6- الشذوذ الجنسي للرجال
في عام 1980، أظهرت الدراسات المعملية على الأرانب أن استنفاد الحيوانات المنوية في المنطقة يمكن أن يؤدي إلى إنتاج ASA. هناك دراسات على البشر تُظهر أنه في الرجال المثليين الذين يعانون من ASA مع عيار عالٍ، هناك تقارير أخرى تفيد بعدم وجود فرق كبير في إنتاج ASA بين هؤلاء الأفراد والمجموعة الضابطة. وفقًا للأدلة السريرية والمخبرية، فإن الصلة بين المثلية الجنسية وتطور ASA هي رابط واضح. ومع ذلك، إذا كان هناك مثل هذا الارتباط، فإن موقع إنتاج هذه الأجسام المضادة هو مخاط الجهاز الهضمي.
حتى الآن، لم يتم توضيح الفيزيولوجيا المرضية لـ ASA عند الرجال بشكل كامل، وقد تم تحدي الاعتقاد بأن تمزق واحد في حاجز الدم في الخصية كافٍ لبدء إنتاج الأجسام المضادة ضد الحيوانات المنوية من خلال الأدلة السريرية. الآلية الوحيدة المعتمدة لتكوين هذه الأجسام المضادة هي انسداد السبيل التناسلي، وخاصة قطع القناة الدافقة، والمكان الأكثر احتمالا لتكوين ASA في هذه الحالة هو البربخ. مع بداية الإنتاج الموضعي والجهازي، تدخل هذه الأجسام المضادة مناطق أخرى من الجهاز التناسلي.
الأجسام المضادة للحيوانات المنوية عند النساء
في النساء، يمكن العثور على الأجسام المضادة للحيوانات المنوية في مصل الدم، ومخاط عنق الرحم، والسائل الجريبي. يختلف تركيز الغلوبولين المناعي في مخاط عنق الرحم باختلاف الظروف الهرمونية في الدورة الجنسية والحمل والالتهاب، ولا يرتبط بكمية الأجسام المضادة في المصل. في السائل الجريبي، تكون كمية الغلوبولين المناعي في المصل هي نفسها أو أقل. تظهر الدراسات المعملية أن السائل المنوي يحتوي على عوامل مثبطة للمناعة، وأن الحواتم المثبطة الموجودة على سطح الحيوانات المنوية يمكن أن تثبط استجابة الخلايا البائية B. عادة لا تظهر النساء اللواتي يتمتعن بصحة جيدة في الإنجاب استجابة مناعية قوية للحيوانات المنوية، ولكن هناك نساء لديهن مستويات عالية من ASA.
هناك ملاحظات تظهر أن النساء المصابات بـ ASA عادة ما يكون لديهن أزواج لديهم ASA أيضًا. تشير دراسات أخرى إلى أن ثلث النساء المصابات بـ ASA يستجيبن فقط لمستضدات الحيوانات المنوية لشريكهن، وليس لمستضدات الحيوانات المنوية العامة. الفرضية الأولى لـ ASA بين النساء هي أن الملاحظات تظهر أن مستضدات الحيوانات المنوية البشرية تشبه المستضدات الميكروبية، وأن وجود هذه الميكروبات يمكن أن يؤدي إلى إنتاج أجسام مضادة تتفاعل مع الحيوانات المنوية، وتتفاعل أيضًا.
الفرضية الثانية هي أن الحيوانات المنوية المغلفة بالأجسام المضادة يمكن أن تحفز إفراز إنترفيرون جاما من الخلايا الليمفاوية. ينشط إنترفيرون جاما الضامة، وتقوم الضامة بتنشيط مستضدات الحيوانات المنوية لتنشيط 7 خلايا مساعدة وخلايا ب B، وبالتالي إنتاج ASA في الجهاز التناسلي الأنثوي. تشير فرضية حديثة إلى أنه بعد أن يكرر الرجل المصاب بـ ASA ممارسة الجنس مع زوجته، يتم إنتاج الأجسام المضادة المضادة للنمط الحمقى Anti-idiotype في جسم الأنثى والتي تسهل الاستجابات المناعية للحيوانات المنوية.
اختبارات الكشف عن الأجسام المضادة للحيوانات المنوية
تم استخدام طرق مختلفة للكشف عن الأجسام المضادة للحيوانات المنوية، ولكن يمكن مناقشة نتائجها السريرية من خلال العوامل المتداخلة أثناء الاختبار. يمكن أن تؤثر عوامل مثل نوع اختبار الكشف عن الأجسام المضادة ونوع غسل السائل المنوي والفاصل الزمني بين القذف والاختبار ومعايير تفسير النتائج على نتائج هذه الطرق.
1- طرق تراص (آجلوتیناسیون) وتثبيت الحيوانات المنوية
في اختبار تراص (آجلوتیناسیون) الجيلاتين (GAT)، يتم جمع مصل المريض وتعطيل النظام التكميلي، ثم يتم خلط السائل المنوي للمتبرع بدون ASA في محلول الجيلاتين. تم الإبلاغ عن تراص الحيوانات المنوية في محلول الجيلاتين كنتيجة إيجابية. في تجربة أخرى مماثلة، قام TSAT بخلط الحيوانات المنوية من المتبرع مع مصل المريض في قطرة صغيرة وتقييم التراص تحت المجهر. اختبار تثبيت الحيوانات المنوية (SIT) هو نفس طريقة TSAT، باستثناء أنه في هذه الطريقة يتم إضافة بعض مصل الأرانب أو خنزير غينيا كمكمل ثم يتم تقييم العينة. في هذه الطريقة، يتم تسجيل نتيجة إيجابية عندما يكون أكثر من نصف الحيوانات المنوية غير متحركة. بسبب العيوب، لا ينصح بهذه الأساليب للتجارب السريرية.
2-اختبارات مخاط (موکوس) عنق الرحم
يمكن الكشف عن وجود ASA في مخاط عنق الرحم عن طريق طرق in vivoو in vitro الجسم الحي وفي المختبر. في اختبار الجماع coital test (PCT)، يتم أخذ عينة من مخاط عنق الرحم بين 9-14 ساعة بعد الجماع وتقييم حركة الحیوانات المنویة. إذا كانت هناك أجسام مضادة للحيوانات المنوية في مخاط عنق الرحم، فإن معظم حركات الحيوانات المنوية ستكون اهتزازية وسيتم تقليل الحركات التقدمية. تم العثور على كلا النوعين من الغلوبولين المناعي A و G في مخاط عنق الرحم. في المختبر، يتم استخدام مخاط عنق الرحم واختبار القرب من الحيوانات المنوية (SCMC). في هذا الاختبار، يتم أخذ عينات من مخاط عنق الرحم وخلطها مع عينة الحيوانات المنوية وتقييم النمط الاهتزازي لحركة الحيوانات المنوية.
3- استخدام ELISA وطرق الفلورسنت المناعي
يمكن استخدام تقنية ELISA كميًا لوجود ASA في العينة. تستخدم هذه الطريقة الجلوبولينات البشرية المضادة للمناعة، والتي ترتبط تساهميًا مع الإنزيمات التي يمكن أن تكسر الركيزة الصبغية وتنتج تفاعلًا لونيًا. لذلك، من خلال فحص كمية الصبغة المنتجة، يمكن تحديد تركيز الأجسام المضادة في العينة. في قياس التدفق الخلوي، تلطخ العينات بالوميض المناعي للكشف عن وجود الأجسام المضادة ويتم قياس عدد الحيوانات المنوية الملطخة بواسطة مقياس التدفق الخلوي. لا يتم استخدام كلتا الطريقتين على نطاق واسع نظرًا لتعقيدهما وارتفاع التكلفة ومتطلبات المعدات.
4- اختبار MAR
في هذه الطريقة البسيطة والابتدائیة، يتم الجمع بين عينة السائل المنوي أو تعليق خلايا الدم الحمراء المغلفة بالجلوبيولينات المناعية البشرية ومضادات الغلوبولين المناعي للأرانب وتقييمها لتشكيل تجمعات الحيوانات المنوية وخلايا الدم الحمراء. اليوم، تستخدم المنتجات التجارية في هذا الاختبار حبيبات اللاتكس المغلفة بالجلوبيولين المناعي G أو A بدلاً من خلايا الدم الحمراء. تلتصق الحيوانات المنوية التي تتحرك بين هذه الحبوب بها وتشكل تراصًا، وفي هذه التجمعات يكون للحيوانات المنوية حركات رياضية. تستخدم هذه الطريقة عينات السائل المنوي غير المغسولة.
تكون نتائج الاختبار إيجابية عندما يكون أكثر من نصف الحيوانات المنوية المتحركة ملتصقة بحبيبات اللاتكس. على الرغم من أن MAR هي طريقة بسيطة ومثالية لاكتشاف ASA على الحيوانات المنوية، إلا أن لها أيضًا قيودًا، لا يمكن إجراء هذا الاختبار على عينات oligo الیغو و astheno استنو و azoospermiaالحیوانات المنویة.
5- اختبار IBT
هذه الطريقة هي أيضًا طريقة بسيطة وغير مكلفة نسبيًا لتحديد ASA لسطح الحيوانات المنوية ولا تتطلب معدات باهظة الثمن مثل اختبار MAR. الحبيبات المستخدمة في هذه الطريقة عبارة عن خرزات بولي أكريلاميد مرتبطة بالجلوبيولين المناعي للأرانب ضد الأجسام المضادة البشرية من خلال المرفقات التساهمية کوفالان. في هذه الطريقة، من الممكن تحديد نوع الجسم المضاد وموقع ارتباط الأجسام المضادة وكمية الحيوانات المنوية المغطاة بالجسم المضاد. في هذه الطريقة، يتم غسل عينة السائل المنوي وفصل الحيوانات المنوية عن بلازما السائل المنوي ثم خلطها مع الحبيبات المغطاة بأجسام مضادة للجلوبيولين المناعي البشري، وبعد فترة من الزمن يتم حساب عدد الحيوانات المنوية المرتبطة بالسائل المنوي. ويتم الإبلاغ عن نتائج إيجابية عندما يلتصق أكثر من نصف الحيوانات المنوية المتحركة ببذرة واحدة أو أكثر.
يمكن استخدام هذه الطريقة بشكل غير مباشر للكشف عن ASA في السوائل البيولوجية مثل بلازما السائل المنوي أو مصل الدم أو مخاط عنق الرحم. في هذه الطريقة، يتم الجمع بين عينة من الحيوانات المنوية من المتبرع والسائل المطلوب (على سبيل المثال، مصل المريض) ثم يتم إجراء اختبار IBT وتقييمه. من بين الطرق المذكورة، يوصي WHO دليل منظمة الصحة العالمية بإجراء اختبارات MAR و IBT فقط، وتستخدم هاتان الطريقتان على نطاق واسع في مختبرات طب الذكورة لتقييم العقم عند الأزواج.
العقم والأجسام المضادة للحيوانات المنوية
تم إجراء الدراسات الأولى حول العلاقة بين ASA والعقم في عام 1954 وتم الإبلاغ عن أن ASA يمكن أن يكون سببًا للعقم. على الرغم من أن التأثيرات السريرية لـ ASA قد تمت دراستها على نطاق واسع حتى الآن، إلا أنها لا تزال تواجه تحديات. نتائج الدراسات حول انتشار ASA في مجتمع الأزواج المصابين بالعقم لها نتائج مختلفة لأسباب مثل الخصوصية والحساسية المختلفة لاختبارات تحديد ASA وفحص مجتمع الدراسة. ومع ذلك، فقد تم اقتراح ASA كسبب محتمل للعقم وتم اقتراح آليات مختلفة لذلك.
التغيير الوحيد الذي تم إثباته في السائل المنوي في وجود ASA هو التراص، وهي ظاهرة تعتمد على الوقت وتربط الحيوانات المنوية ببعضها البعض وتقلل من حركتها. أول آلية موثقة لتدخل ASA في الخصوبة هي ضعف تغلغل الحيوانات المنوية في مخاط عنق الرحم. تشارك كل من ASA الموجودة على سطح الحيوانات المنوية و ASA في مخاط عنق الرحم في هذا الأمر وستقلل من تغلغل الحيوانات المنوية في حيز الرحم، ويعتمد مدى هذه المشاركة على تركيز الأجسام المضادة. الأجسام المضادة ضد ذيل الحيوانات المنوية ROS ليس لها دور في تعطيل تفاعل عدم تناسق مخاط عنق الرحم وليس لها تأثير على العقم.
يمكن أن تشارك ASA أيضًا في عملية قدرة الحيوانات المنوية واستجابتها. يمكن للأجسام المضادة أن تخفي جزيئات السطح المتورطة في الارتباط بالهربس النطاقي (زونا بلوسیدا)، وبالتالي تعطيل عملية الإخصاب. يعتمد تعطيل تفاعلات الحيوانات المنوية والبويضة بواسطة ASA على مكان ارتباط الأجسام المضادة بسطح الحيوانات المنوية ونوع المستضد الذي تغطيه الأجسام المضادة. أفادت بعض الدراسات أيضًا أن ASA يمكن أن تتداخل أيضًا مع المراحل المبكرة من التطور الجنيني والغرس. على الرغم من وجود أدلة كافية لدعم آثار ASA على العقم، لم يتم تحديد انتشار وآليات. بشكل عام، يمكن أن تؤثر المستويات المرتفعة من ASA على عمليات الإنجاب المبكرة مثل هجرة الإناث، والتخصيب، والمراحل المبكرة من التطور الجنيني. اليوم، هناك اختبارات موثوقة لتحديد هذه الأجسام المضادة التي يمكن أن تساعد في تشخيص أسباب العقم عند الأزواج.
الاستراتيجيات العلاجية للعقم الناجم عن ASA
يمكن تقسيم الاستراتيجيات العلاجية إلى ثلاث مجموعات. المجموعة الأولى هي العلاجات التي تؤدي إلى كبت جهاز المناعة. تستخدم المجموعة الثانية تقنيات الإنجاب المساعدة والمجموعة الثالثة تستخدم طرقًا معملية لإزالة الأجسام المضادة. العلاج الأكثر شيوعًا لتثبيط المناعة هو استخدام الكورتيكوستيرويدات. على الرغم من إجراء دراسات حول صحة العلاجات على الأزواج المصابين بالعقم ومعدلات الحمل، نظرًا لعدم وجود مجموعات مختلفة للتحكم في البلازما، فمن الممكن مقارنة واستنتاج استخدام هذه الأدوية في الاستخدامات المختلفة وأنواع الأدوية وتقنيات العقم المناعي. لا يملك. يجب أيضًا مراعاة استخدام هذه الأدوية وفقًا لآثارها الجانبية.
يمكن أن تتغلب مساعدات الخصوبة على الحواجز المحتملة التي وضعها ASA على طريق الحيوانات المنوية إلى البويضة والتخصيب، ويمكن استخدامها لعلاج العقم عند هؤلاء الأفراد. يمكن استخدام أساليب GIFT IVF و IUI و ICSI حسب الحالة. يمكن للأزواج الاستفادة من التلقيح داخل الرحم لأنهم يجدون صعوبة في اختراق الحيوانات المنوية من عنق الرحم. يمكن أن يكون الخيار الأول للعلاج هو التلقيح داخل الرحم لأنه بالإضافة إلى الزيادة المحتملة في عدد الحيوانات المنوية بدون ASA بسبب الغسل أو التقنيات المختبرية، سيتم حل مشكلة مرور الحيوانات المنوية عبر مخاط عنق الرحم، ولكن هذه الطريقة ستحل مشكلة احتمالية وجود أجسام مضادة لإفراز الرحم، ولن تزيل قناتي فالوب.
الخيار التالي هو دورات التلقيح الاصطناعي IVF أو الحقن المجهري ICSI. على الرغم من وجود دراسات ذات نتائج تقلل من معدل الإخصاب والحمل وتزيد من الإجهاض لدى الأزواج المصابين بالعقم مع ASA في دورة أطفال الأنابيب، ولكن في عام 2011 أفاد تحليل تلوي أن ASA في السائل المنوي لديها التأثير على عدم وجود معدل حمل بعد دورات التلقيح الاصطناعي IVF والحقن المجهري ICSI، ولا تزال هاتان الطريقتان مقبولتين لعلاج الأزواج المصابين ب ASA. تم اقتراح العديد من الطرق المختبرية للتغلب على ASA، والتي هي في الواقع علاجات على الحيوانات المنوية لتلميع أو عدم ربط الأجسام المضادة أو لعزل الحيوانات المنوية التي لا تحتوي على ASA.
تخفيف وشطف الحيوانات المنوية بسرعة بعد القذف أو جمع الجزء الأولي من السائل المنوي المليء بالحيوانات المنوية يمكن أن يقلل من ارتباط الأجسام المضادة التي تفرز من البروستاتا والحويصلات المنوية. يمكن أن يؤدي استخدام أطباق بتري المغطاة بمضادات الغلوبولين المناعي البشري إلى زيادة تركيز الحيوانات المنوية بدون ASA. يمكن أن تؤدي معالجة عينة السائل المنوي بحبيبات مناعية أيضًا إلى تقليل عدد الأجسام المضادة المرتبطة بالحيوانات المنوية، أو يمكن أن يؤدي غسل مائة مصل للقضیب عمود من حبيبات ديكستران أيضًا إلى زيادة عدد الحيوانات المنوية التي لا تحتوي على ASA.
يمكن أن تؤدي إضافة 50٪ من مصل إلى مجموعة العينات والغسيل السريع للعينة إلى زيادة تركيز الحيوانات المنوية الخالية من Immunomagnetic separation .ASA كما تم استخدام طريقة الفصل المناعي المغنطيسي لفصل الحيوانات المنوية الخالية من ASA. في هذه الطريقة، يتم ربط الحيوانات المنوية التي تحتوي على أجسام مضادة بجزيئات مغناطيسية وفصلها في مجال مغناطيسي، ولكن هذه الطريقة لم تحظ بقبول إكلينيكي جيد. تم اقتراح طرق أخرى، مثل اختبار القدرات المختبرية باستخدام الألبومين أو البروتياز لتحلل الأجسام المضادة. بشكل عام، لم يتم اقتراح أي من هذه الطرق كطريقة إكلينيكية مثالية.
المصدر: المناهج السريرية للعقم في بيولوجيا الإنجاب
اقرأ أيضًا:
